การศึกษาระยะเวลาและอัตราการฟักไข่ของปลาดุกแอฟริกา (Clarias gariepinus) ด้วยความหนาแน่นของไข่ที่แตกต่างกัน
คำสำคัญ:
ปลาดุกแอฟริกา, อัตราการฟัก, ระยะเวลาการฟัก, ชีววิทยาระบบสืบพันธุ์บทคัดย่อ
จุดประสงค์ของการศึกษาในครั้งนี้เพื่อทดสอบผลของความหนาแน่นของไข่ปลาดุกแอฟริกา (Clarias garipienus) ต่อระยะเวลาฟักและอัตราการฟักไข่ การศึกษาครั้งนี้ได้ทดลอง ณ วิทยาลัยเกษตรและเทคโนโลยีนราธิวาส ระหว่างวันที่ 1-5 เมษายน พ.ศ. 2568 จำนวนน้ำหนักไข่ปลาดุกที่ใช้ในการทดลองครั้งนี้ คือ 5 (T1) 10 (T2) และ 20 (T3) กรัม โดยแต่ละชุดการทดลองมี 3 ซ้ำ โดยไข่ปลาจะถูกนำมาผสมกับน้ำเชื้อปลาดุก จำนวน 0.5 มิลลิลิตร ทุกชุดการทดลอง จากนั้น ไข่ที่ได้รับการผสมจะถูกนำไปวางในตู้ปลาที่มีการให้อากาศอย่างเหมาะสมต่อการฟักไข่ตลอดการทดลอง ผลของการทดลองพบว่าระยะเวลาในการฟักออกเป็นตัวของปลาดุกอยู่ระหว่าง (23.30-23.50 ชั่วโมง) ซึ่งไม่มีความแตกต่างทางสถิติ (P>0.05) สำหรับอัตราการฟักนั้นพบว่า ชุดการทดลองที่ 3 (T3) มีอัตราการฟักสูงที่สุดคือ 88.54+0.39 % ซึ่งแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญ (P<0.05) จากชุดการทดลองอื่น ๆ (T1 71.99+0.62% และ T2 83.11+1.56 %) สรุปได้ว่า ในการฟักไข่ของปลาดุกแอฟริกานั้น ยิ่งมีน้ำหนักไข่มากขึ้น อัตราการฟักของไข่จะเพิ่มขึ้นตามไปด้วย
เอกสารอ้างอิง
Araujo, G.S., Silva, J. W. A., Cotas, J., & Pereira, L. (2022). Fish farming techniques: current situation and trends. Journal of Marine Science and Engineering, 10, 1598. https://doi.org/10.3390/jmse10111598
Azizah, S.N., Susilowati, T., Yuniarti, T., Harwanto, D., & Basuki, F. 2019. The Effect of Different Stocking Density of Eggs on The Production of Sangkuriang Catfish Seeds (Clarias gariepinus Burchell 1822) by Using Filtration System. 4th International Conference on Tropical and Coastal Region Eco Development, IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 246, 012062. https://doi:10.1088/1755-1315/246/1/012062
Barasa, J.E., & Ouma, D.F. (2024). Towards sustainability in seed supply for African catfish,Clarias gariepinus (burchell, 1822) culture in kenya: lessons from Asian catfish industry. Aquaculture Research Volume 1341858, 1 - 21. https://doi.org/10.1155/ 2024/1341858
Borode, A.O., Balogun, A.M., & Omoyeni, B.A. (2002). Effect of salinity on embryonic development, hatchability, and growth of African catfish, Clarias gariepinus, eggs and larvae, Journal of Applied Aquaculture, 12(4), 89 - 93, https://doi.org/10.1300/ J028v12n04_08
Blythe, W.G., Helfrich, L.A., Libey, G., & Beal, W.E. (1994). Induced maturation of striped bass Morone saxatilis exposed to 6, 9, and 12 months photothermal regimes. Journal of the World Aquaculture Society, 25(2), 183 – 192. https://doi.org/10.1111/j.1749- 7345.1994.tb00180.x
Ferosekhan, S., Giri, A. K., Sahoo, S. K., Radhakrishnan, K., Pillai, B. R., Giri, S. S., & Swain, S. K. (2021). Maternal size on reproductive performance, egg and larval quality in the endangered Asian catfish, Clarias magur. Aquaculture, 00, 1 - 12. https://doi.org/10. 1111/are.15385
Hayimad, T., Vedamanikam, V. J., Abol-Munafi, A. B., Shazilli, N. A., Cheloh, N., & Ikhwanuddin, M. (2022). Effect of temperature on hatching rate and incubation period of spotted Babylon snail (Babylonia areaolata) egg capsules. Journal of Technological and Innovative Agriculture, 1(1), 28 - 37. https://www.researchgate.net/publication/362655244_Effects_of_Temperature_on_Hatching_Rate_and_Incubation_Period_of_Spotted_Babylon_Snail_Babylonia_areolata_Egg_Capsules
Julius, O.O., Julius, O.T., & Oluwasusi. V.O. (2025). Comparative studies on reproductive parameters of parents and hybrids of Clarias gariepinus (African mud catfish). World Journal of Advanced Research and Reviews, 25(01), 2328 - 2334. https://doi.org/ 10.30574/wjarr.2025.25.1.0312
Kucskaa, B., Quyen, N. N., Szabo, T., Gebremichael, A., Alebachew, G. W., Bogo, W., Horvath, L., Csorbai, B., Urbanyi, B., Kucharczyk, D., Keszte, S., & Müller, T. (2022). The effects of different hormone administration methods on propagation successes in African catfish (Clarias gariepinus). Aquaculture Reports, 26, 101311.
Kucharczyk, D., Nowosad, J., Wyszomirska, E., Cejko, B.I., Arciuch-Rutkowska, M., Juchno, D., & Boro´ N,A., (2020). Comparison of artificial spawning effectiveness of hCG, CPH and GnRHa in combination with dopamine inhibitors in a wild strain of ide Leuciscus idus (L.) in hatchery conditions. Animal Reproduction Sciences, 221. https://doi.org/ 10.1016/j.anireprosci.2020.106543.
Low, B.W., Liew, J.H., Tan, H.H., Ahmad, A. Zeng, Y., & Yeo, D.C. (2021). The invasion and impacts of the African sharptooth catfish (Clariidae: Clarias gariepinus) in the Malay Peninsula. Freshwater Biology. 2022;67, 1925 – 1937. https://doi.org/10.1111/fwb.13984
Lu, K.H., Hopper, B.R., Vargo, T.M., & Yen, S.S. (1979). Chronological changes in sex steroid, gonadotropin and prolactin secretion in aging female rats displaying different reproductive states1. Biology of Reproduction, 21(1), 193 – 203. https://doi.org/ 10.1095/biolreprod 21.1.193
Lubzens, E., Young, G., Bobe, J., & Cerdà, J. (2010). Oogenesis in teleosts: how fish eggs are formed. General and Comparative Endocrinology, 165(3), 367– 389. https://doi.org/ 10.1016/j.ygcen.2009.05.022
Maradun, H. F., Umar, F., Ibrahim, A., Mubarak, A., Zarau, I. J., & Muhammad, S. A. (2018). Effect of Different Doses of Ovulin Hormone on the Induced Breeding Performance of Clarias gariepinus. Journal of Animal and Veterinary Sciences, 5(1), 1 - 5.
Otoh, A. J., Udoh J. P., & Okoko A. C. (2024). Egg quality and fecundity of Clarias gariepinus broodstock cultured at different water depths in indoor concrete tanks. Asian Journal of Fisheries and Aquatic Research 26 (6), 29-35. https://doi.org/10.9734/ajfar/2024/ v26i6773.
Oyinlola, M.A., Reygondeau, G., Wabnitz, C.C., Troell, M., & Cheung, W.W. (2018). Globalestimation of areas with suitable environmental conditions for mariculture species. PLoS ONE 13 (1), e0191086. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0191086
Patta, C., Panthum, T., Thatukan, C., Wongloet, W., Chalermwong, P., & Wattanadilokchatkun, P. (2024). Questioning inbreeding: Could out breeding affect productivity in the North African catfish in Thailand? PLoSONE 19(5). e0302584. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0302584
Pomeroy, R., Dey, M.M., & Plesha, N. (2014). The social and economic impacts of semi-intensive aquaculture on biodiversity, Aquaculture Economics & Management, 18(3), 303 - 324. https://doi.org/10.1080/13657305.2014.926467
Phelps, R.P., Hastey, R., Pendetar, A., Linley, L., Papanikos, N., & Dunham, R. A. (2007). Effectsof temperature on the induced spawning of channel catfish and the production of channel×blue catfish hybrid fry. Aquaculture 273, 80 – 86. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.09.019
Wattanutchariya, S., & Panayotou, T. (1981). The Economics of Aquaculture: The Case of Catfish in Thailand. Proceedings of Aquaculture Economics Research in Asia a workshop held in Singapore, 2-5, 26 - 34. https://portals.iucn.org/library/node/21835
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2025 วารสารวิทยาศาสตร์ชีวภาพการเกษตร และเทคโนโลยี
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ข้อความลิขสิทธิ์ เติมด้วยค่ะ
